Mikrobilogia ćw nr2

Technika mikroskopowania

Budowa mikroskopu:

- okular – powiększenie obrazu tworzonego przez obiektyw

- tubus – formowania powiększonego obrazu pośredniego

- śruba makrometryczna – wstępna regulacja odległości

- śruba mikrometryczna

- rewolwer – prosta zmiana obiektywu

- obiektywy – zbierają światło wychodzące z przedmiotu i tworzą jego powiększony obraz pośredni

- stolik łapki

- śruby do poruszania stolikiem

- kondensator

Typy mikroskopów

- świetlny

- ultramikroskop

-luminescencyjny

- fazowo – kontrastowy

- ultrafioletowy

- elektronowy

- elektronowy skaningowy

Mikroskop świetlny:

- zasadą działania jest wzmocnienie dwóch soczewek pracujących w zespole. Jedna to obiektyw a druga to okular. Otrzymywane powiększenie jest iloczynem powiększenia obiektywu i okularu. Zastosowanie z laboratorium mikrobiologicznym i cytologicznym.

Opis komórki:

- kształt – kuliste, cylindryczne, spiralne w postaci rozgałęzionych nici lub kształtu zmiennego ( polimorfizm)

- sposób barwienia

- wielkość: mykoplazmy 0,125 µm – 0,2 µm

Ziarenkowce 0,5 – 1,5 µm

Pałeczki i laseczki 1 - 10 µm

Krętki do 40 µm

- ułożenie komórek względem siebie

Podział drobnoustrojów:

  1. Kuliste ( ziarenkowce):

Dwoinki – Streptococcus pneumoniae

Czwórniaki – Tetracoccus spp

Pakietowce – Sarcina spp

Gronkowce – Staphylococcus aureus

Paciorkowce – Streptococcus pyogenes

  1. Cylindryczne

Pałeczki – Escherichia coli

Laseczki – Clostridium difficile

Formy nieregularne – Corynebacterium spp

  1. Spiralne

Przecinkowce – Vibrio cholerae

Śrubowce – Spirillum spp

Krętki – Treponema pallidum

Typy ułożenia przetrwalników:a

  1. Terminalne ( biegunowe)

  2. Subterminalne ( podbiegunowo)

  3. Paracentralnie ( przyśrodkowo)

  4. Centralnie ( środkowo)

Typy urzęsienia komórki bakteryjnej:

- monatricha – jednorzęsne ( Vibrio cholerae)

- ditricha – dwurzęsne ( Campylobacter jejuni)

- lofotricha – jednobiegunowe ( Helicobacter pylori)

- amfitricha – dwubiegunowe ( Spirillum spp)

- peritricha – wkołorzęsne ( Salmonella spp)

- nietypowe – ( Mobiluncus spp)

- atricha – bezrzęsne ( Staphylococcus spp.)

Cel barwienia:

- ułatwienie obserwacji komórek oraz odróżnienie ich od innych elementów preparatu.

Rodzaje preparatów:

  1. Bezpoośredni – wykonany z materiału klinicznego pobranego od pacjenta

  2. Pośredni – wykonany z 18 – 24 godzinnej hodowli drobnoustrojów

Metody barwienia

↙ ↘

Pozytywne negatywne ( wybarwiamy tło, czarny

(wybarwiamy komórki) barwnik)

↙ ↘

Proste ( jeden barwnik ) złożone ( minimum 2 barwniki)

Barwienie przeżyciowe – modyfikacje barwienia pozytywnego prostego, ale stosowanego do preparatów mokrych, żywych ( cel- odróżnienie komórek żywych od martwych i obliczenie stosunku procentowego)

Metody specjalne:

  1. Do barwienia bakterii:

Ziechla – Neelsena – prątki, zarodniki grzybów, przetrwalniki bakterii

Neissera – maczugowce, wykrywamy obecność białek zapasowych

  1. Do barwienia przetrwalników:

Möllera – ( przetrwalniki barwią się na czerwono, komórki na niebiesko)

Domera – ( przetrwalniki barwią się na czerwono, komórki niezabarwione)

  1. Do barwienia otoczek:

Negatywno – pozytywna wg Burnego – Giusa

Negatywne

  1. Do barwienia rzęsek:

Leifsona – (stosując barwniki z taminą)

Barwienie negatywne:

- polega na zabarwieniu tła, a pozostawieniu niezabarwionych komórek. Umożliwia obejrzenie kształtu komórek bakterii lub elementów komórki trudnych do wybarwienia np.: otoczek. Używamy barwników grubo – dyspersyjnych tj: tusz chiński, nigrozyna, rzadziej czerwień Kongo.

Barwienie bakterii metodą Grama:

Utrwalenie preparatu → Fiolet krystaliczny → Płyn Lugola → Odbarwienie roztworem alkoholu → Fiuksyna zasadowa

Bakterie Gram+: Staphylococcus spp, Streptococcus spp, Bacillus spp, Clostridium spp.

Bakterie Gram -: Pseudomonas spp, Neisseria spp, Moraxella spp.

Bakterie Gram chwiejne: Corynebacterium spp.

Atypowe: Chlamydia spp, Mycoplasma spp., Rickettsia spp.

Posługiwanie się mikroskopem:

- siłę oświetlenia regulujemy przy pomocy osłony, na stoliku przedmiotowym umieszczamy preparat z naniesioną na niego kropelką olejku immersyjnego, obniżyć tubus za pomocą śruby makrometrycznej patrząc przez okular, obniżać przy pomocy śruby makrometrycznej umieszczony preparat na stoliku, ustawić ostrość obrazu przy pomocy śruby mikrometrycznej.

Przygotowanie:

- utrwalanie powoduje: częściową denaturację struktur komórkowych co ułatwia wnikanie barwnika, zabicie komórek bakterii, przytwierdzenie do szkiełka co przeciwdziała zmyciu preparatu podczas barwienia.


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Mikrobiologia Ćw. 10, weta semestr 3, Semestr 3, Mikrobiologia
Mikrobiologia ćw 1
Mikrobiologia cw 4
mikrobiologia ćw 3, Dokończenie ćwiczenia 2
Mikrobiologia Ćw. 5, ★ materiały rok II wety, II rok, MIKROBIOLOGIA, Mikrobiologia ćwiczenia
Sprawozdanie z ćw nr2
Mikrobiologia Ćw.6, ★ materiały rok II wety, II rok, MIKROBIOLOGIA, Mikrobiologia ćwiczenia
mikrobiologia ćw 4, Oznaczanie liczebności Escherichia coli w hodowli nocnej
Mikrobiologia ćw
zestaw ćw. nr2 kolana koślawe, College, Pedagogika, rok III, Gimnastyka korekc. - kompens, k. koślaw
Mikrobiologia Ćw. 4, ★ materiały rok II wety, II rok, MIKROBIOLOGIA, Mikrobiologia ćwiczenia
Mikrobiologia - ćw 3, Mikrobiologia
Mikrobiologia cw 10
Mikrobiologia ćw 3
CW nr2 VHF SAILOR 48 TMZ lacznosc
Mikrobiologia Ćw. 11, weta semestr 3, Semestr 3, Mikrobiologia
cw nr2 - VHF SAILOR TM, Szkoła, penek, Przedmioty, Łączność morska
Mikrobiologia Ćw.9, ★ materiały rok II wety, II rok, MIKROBIOLOGIA, Mikrobiologia ćwiczenia

więcej podobnych podstron