DSC00211 (8)

1

jedru, owmąć dokładni*fol.ą aluminiową. Do wszystkich probówek wlać po 9 cm* roztworu intubacyjnego Następnie do pierwszej probówki (kontrola) wlać 0,5 cm* 0,5 M sacharozy, do drugiej 0,5 cm zagotowanej zawiesiny chloroplastów, do trzeciej i czwartej (owinięty folia aluminiową; po 0,5 tor' zawiesiny świeżych chloroplastów. Do trzech prób badanych dodawać kolejno po 0,1 tub 0,5 om* 0,05% roztworu 2,6-dichlorofenoloindofenolu, energicznie zamieszać i natychmiast zmierzyć w nich na spekolu absorbancję przy 600 nm wobec kontroli (to). Probówki drugą i trzecią umieścić w łaźni wodnej w temp 25°C i wystawić na działanie 100 W-owej żarówki. ProDOwkę czwartą (owiniętą folią) wstawić do ciemności zakrywając folią również od góry Następnie pomiary wykonywać co 15 minut w ciągu pół godziny. Przed każdym pomiarem probówki wstrząsnąć Wyniki umieścić w tabeli nr 1 i wykonać wykres odkładając na osi odciętych czas w minutach, a na osi rzędnych absorbancję

Tabela I. Redukcja 2,6»dichlorof'cnoloindofenolu przez wyizolowane chloroplasty (wartości absorbancji mierzonej przy długości fali 600 nm). -_    ^v

! ~ — Materiał	Naświetlanie	AgOO ł ... • \
		tn	tis		tjO 115 ~ tjMł
i Chloroplasty ! poddane 1 termicznej i denaturacji	Światło					1
; świeże I ........ .....................	Światło					_1
	Ciemność					1

vwać uzyskane wyniki

Literatura

1    Hall D O Rao K K , Fotosynteza. WNT, W-wa, 1999, s.43-44

2, Machlis L, Torrey J.G„ Planls in action. W.H. Freeman and Company, San Francisco, 1959, s 131-141