background image

 

Biochemia dla Biologii  nr ETCS  

Reakcje barwne cukrów 

 

 

Koordynatorem przedmiotu jest Katedra Biochemii  

 

Przedmiot prowadzony przez Katedrę Biochemii  

 

ZADANIE 8

 

TYTUŁ: REAKCJE BARWNE CUKRÓW 

 

Forma zaliczenia: Kolokwium z części teoretycznej do ćwiczeń oraz praktyczne zaliczenie 
ć

wiczeń 

Materiały i urządzenia: 

• 

Materiały  

1.  badane cukry 
2.  stężony kwas siarkowy 
3.  stężony HCl 
4.  wodorotlenek sodu 
5.  α-naftol 
6.  odczynnik Fehlinga 
7.  odczynnik Barfoeda 
8.  odczynnik Biala 
9.  odczynnik Seliwanowa 
10. roztwór jodu 

• 

Urządzenia  

1.  probówki 
2.  zlewki 
3.  pipety 
4.  palniki 
5.  łaźnie wodne 
 

INFORMACJE TEORETYCZNE:.  

 

Reakcja  Molisha  to  najbardziej  ogólna  reakcja  na  cukry,  zarówno  wolne  jak  

i  związane.  Ujemny  jej  wynik  wyklucza  obecność  cukru,  dodatni  zaś  nie  zawsze  jest 
wystarczający  do  jego  stwierdzenia,  gdyż  podobną  reakcję  dają  aldehydy,  aceton  i  inne. 
Reakcja  Molisha  polega  na  powstaniu  czerwono-fioletowego  zabarwienia  w  wyniku 
kondensacji pochodnych furfuralowych z α-naftolem. 

Wiele  reakcji  oksydacyjno-redukcyjnych  cukrów  opiera  się  na  redukcji  kationów 

miedziowych Cu

2+

 do Cu

1+

. Tworzący się w środowisku zasadowym niebieski osad Cu(OH)

2

 

wchodzi  w  reakcję  z  grupami  OH  cukrowca,  dając  kompleks  barwy  ciemnoniebieskiej, 
rozpuszczalny  w  wodzie.  Wodorotlenek  miedzi  (II)  redukuje  się  najpierw  do  wodorotlenku 
miedzi (I), który podczas ogrzewania traci wodę i przechodzi w tlenek miedzi (I) Cu

2

O, który 

wytrąca  się  w  postaci  ceglasto-czerwonego  osadu. W reakcji Fehlinga wodorotlenek miedzi 
(II) występuje w postaci kompleksu z winianem sodowo-potasowym. 

Reakcja  Barfoeda  pozwala  odróżnić  cukry  proste  od  dwucukrów  redukujących  i  jest 

modyfikacją  odczynnika  Fehlinga.  Redukcję  kationów  miedzi  (II)  przeprowadza  się  
w  środowisku  słabo  kwaśnym,  wytworzonym  przez  kwas  mlekowy.  W  tych  warunkach 
reakcja  przebiega  wolniej  niż  w  środowisku  zasadowym,  przy  czym  dwucukry  utleniają  się 
znacznie  wolniej  (po  około  15-20  minutach)  w  porównaniu  z  monosacharydami  (po  3 
minutach). Na tej podstawie można je od siebie odróżnić. 

Reakcja Biala opiera się na fakcie, iż w obecności soli żelaza (III) furfural powstający 

z rybozy w środowisku HCl daje z orcyną kompleks o barwie zielonej. 

background image

 

Biochemia dla Biologii  nr ETCS  

Reakcje barwne cukrów 

 

 

Koordynatorem przedmiotu jest Katedra Biochemii  

 

Przedmiot prowadzony przez Katedrę Biochemii  

 

W  reakcji  Seliwanowa  barwny  czerwono  wiśniowy  związek  z  rezorcyną  daje 

hydroksymetylofurfural, powstający dużo łatwiej z ketoz niż z aldoz pod wpływem działania 
kwasu  solnego.  Warunkiem  uzyskania  prawidłowego  wyniku  reakcji  jest  stężenie  kwasu 
(12%) oraz czas ogrzewania (30 sek.), w przeciwnym razie reakcja jest nieswoista dla ketoz. 

Reakcja  wykrywania  wielocukrów  polega  na  zdolności  tworzenia  przez  skrobię  oraz 

inne  polisacharydy  barwnych  połączeń  z  jodem.  Polisacharyd  o  budowie  liniowej  nie  jest 
zdolny  do  tworzenia  kompleksu  z  jodem.  Musi  istnieć  konfiguracja  spirali  (helisy),  aby 
cząsteczki jodu mogły się w niej regularnie ułożyć. Jedna cząsteczka jodu przypada na sześć 
reszt  glukopiranozowych,  czyli  na  jeden  skręt  spirali.  W  wyniku  połączenia  się  skrobi  
z jodem powstaje zabarwienie niebieskie. Glikogen daje zabarwienie czerwono-brunatne. 

Skrobia pod wpływem kwasów ulega stopniowej hydrolizie przez stadium dekstryn do 

maltozy  i  małej  ilości  glukozy.  Pośrednimi  produktami  są:  amylodekstryny  (zabarwienie  
z jodem fioletowe), erytrodekstryny (zabarwienie z jodem czerwone), achro- i maltodekstryny 
oraz  maltoza  (zabarwienie  z  jodem  nie  powstaje).  W  miarę  hydrolizy  wzrastają  również 
stopniowo właściwości redukujące. 
 
Przebieg do
świadczenia: 
Podzadanie 1: reakcja Molisha -

 odróżnianie cukrowców od innych związków 

organicznych 

 Do  1  ml  roztworu  glukozy  dodać  dwie  krople  α-naftolu,  zamieszać,  a  następnie 

podwarstwić  2  ml  stężonego  kwasu  siarkowego.  Zapisać  obserwację  i  wyciągnąć 
odpowiednie  wnioski.  Reakcję  powtórzyć  dla  roztworu  sacharozy,  skrobi  oraz 
badanego cukru. 

Podzadanie 2: reakcja Fehlinga -

 odróżnianie cukrów redukujących od nieredukujących 

  Do  1  ml  roztworu  glukozy  dodać  2,5  ml  odczynnika  Fehlinga  i  ogrzewać  przez 

kilka  minut  we  wrzącej  łaźni.  Zapisać  obserwację  i  wyciągnąć  odpowiednie 
wnioski.  Reakcję  powtórzyć  dla  roztworu  sacharozy,  maltozy,  skrobi  oraz 
badanego cukru. 

Podzadanie 3: reakcja Barfoeda -

 odróżnianie cukrów prostych od dwucukrów 

redukujących 

  Do 1 ml roztworu glukozy dodać 2,5 ml odczynnika Barfoeda i ogrzewać przez 3 

minuty  we  wrzącej  łaźni.  Zapisać  obserwację  i  wyciągnąć  odpowiednie  wnioski. 
Reakcję powtórzyć dla roztworu maltozy oraz badanego cukru. 

Podzadanie 4: reakcja Biala -

 odróżnianie pentoz od heksoz 

  Do  1  ml  roztworu  rybozy  dodać  3  ml  odczynnika  Biala  i  ogrzać  do  wrzenia. 

Zapisać  obserwację  i  wyciągnąć  odpowiednie  wnioski.  Reakcję  powtórzyć  dla 
roztworu glukozy, arabinozy oraz badanego cukru. 

Podzadanie 5: reakcja Seliwanowa -

 odróżnianie ketoz od aldoz 

  Do  1  ml  roztworu  fruktozy  dodać  1  ml  odczynnika  Seliwanowa  i  ogrzewać  do 

wrzenia 30 sekund. Zapisać obserwację i wyciągnąć odpowiednie wnioski. Reakcję 
powtórzyć dla roztworu sacharozy, glukozy oraz badanego cukru. 

 

 

background image

 

Biochemia dla Biologii  nr ETCS  

Reakcje barwne cukrów 

 

 

Koordynatorem przedmiotu jest Katedra Biochemii  

 

Przedmiot prowadzony przez Katedrę Biochemii  

 

Podzadanie 6: reakcja wykrywania wielocukrów 

  Do  1  ml  roztworu  skrobi  dodać  1  ml  roztworu  jodu.  Zapisać  obserwację  

i  wyciągnąć  odpowiednie  wnioski.  Reakcję  powtórzyć  dla  roztworu  glikogenu  
i badanego cukru. 

Podzadanie 7: hydroliza skrobi i wykrywanie jej produktów 

  Do  10  ml  roztworu  skrobi  dodać  1  ml  stężonego  roztworu  HCl  i  ogrzewać  we 

wrzącej  łaźni  wodnej.  W  statywie  ustawić  2  szeregi  probówek  po  10  sztuk  i  co 
minutę  przenosić  po  kilka  kropli  do  probówek  pierwszego  i  drugiego  szeregu.  W 
pierwszym  szeregu  probówek  zawierającym  po  1  ml  bardzo  rozcieńczonego 
roztworu  jodu  (ok.  0,002%)  obserwować  zmianę  zabarwienia.  Drugi  szereg 
probówek zobojętnić wodorotlenkiem sodowym i wykonać próbę Fehlinga. Zapisać 
obserwację i wyciągnąć odpowiednie wnioski. 

 

 LITERATURA 

1.  Biochemia”, L. Stryer, PWN, Warszawa 1997 i nowsze 

2.  „Biochemia Harpera”, R. K. Murray i wsp., PZWL, Warszawa 1995 i nowsze 

3.  Cytobiochemia”, L. Kłyszejko-Stefanowicz, PWN, Warszawa 1995, 2002 

4.  Biochemia- Krótkie Wykłady”, B. D. Hames i wsp., PWN, Warszawa 2002 

5.  Zarys Biochemii Cz.1, Karlson P., Pwn W-Wa 1987 

6.  Biochemia kręgowców, Minakowski W. PWN W-wa 1998 

7.  Ćwiczenia z biochemii”, L. Kłyszejko-Stefanowicz, PWN, Warszawa 1999, 2003 

8.  Ćwiczenia z biochemii, Strzeżek J wyd. ART. 1997 

9.  Ćwiczenia z biochemii, Logoń A. wyd. ART. 1997