Wykład 8
Odpowiedź komórki na uszkodzenia DNA – regulacja cyklu komórkowego, aktywacja punktów kontrolnych
Kontrola cyklu komórkowego – cykliczna aktywacja kinaz.
Regulacja cyklu – kaskadowe reakcje fosforylacji i defosforylacji. Za reakcje fosforylacji są odpowiedzialne kinazy, ich rodzaj mianowicie kinazy zależne od cyklin.
Cykl życiowy komórki:
1953 – Howard i Pelec opisali cykl komórkowy, nazwali fazy cyklu komórkowego(G1,S,G2,M,G0)
2001 – Howard i współpracownicy dostali Nobla za odkrycia regulacji cyklu komórkowego
Kinazy zależne od cyklin - Cdk:
Są kinazami serynowo/treoininowymi
Obecne podczas całego cyklu komórkowego, lecz ich aktywacja następuje poprzez związanie się cyklin w odpowiedniej fazie cyklu komórkowego, dezaktywacja tych kinaz następuje poprzez defosforylację
Aktywowane w odpowiedniej fazie, po niej następuje utrata aktywności
Aktywność uzależniona…
Cykl komórkowy – cykliny:
Stężenie cyklin jest duże w czasie mitozy, po mitozie stężenie cyklin spada, i pownownie roślnie w interfazie.
Zatrzymanie cyklu:
Aktywacja punktów kontrolnych – opóźnienia cyklu, całkowite zablokowanie cyklu, starzenie komórki, apoptoza
Cykliczna aktywacja cyklin:
Kinazy zależne od cyklin(Cdk)
Serynotreoninowe
W zależności od fazy cyklu komórkowego aktywne różne kinazy zależne od cyklin i cykliny
Kinazy obecne przez cały cykl komórkowy(aktywowane na różnych etapach)
Stężenia podlegają cyklicznym wahaniom w czasie cyklu komórkowego
Ilość drastycznie spada pod koniec mitozy
Aktywacja Cdk
Początkowa aktywacja CDK - związanie z odpowiednimi cyklinami
Pełna aktywacja – fosforylacja treoniny znajdującej się w konserwatywnej pętli T przez CAK (stabilizacja CDK)
Aktywność CDK podczas przebiegu cyklu komórkowego jest regulowana poprzez skoordynowaną aktywność kinaz (CAK) i fosfataz.
Kontrola przebiegu cyklu komórkowego:
Przejście komórek przez daną fazę cyklu
Koordynacja fosforylacji i defosforylacji kompleksu CDK-cyklina
Aktywność CDK podczas przebiegu cyklu komórkowego jest regulowana przez skoordynowaną aktywność kinaz aktywujących CDK (CAK) i fosfataz
Dwie drogi inaktywacji kompleksu cyklina – Cdk:
ubikwitynacja cyklin – proteosomalna degradacja cyklin (proces nieodwracalny)
inaktwacja aktywności samej kinazy - fosforylacja Thr14, Thr16 w pętli wiążącej ATP (proces odwracalny – defosforylacja przy udziale CDC25 fosfatazy, co powoduje przywrócenie aktywności Cdk)
Główne cykliny ssaków: D, E, A, B.
W zależności od fazy cyklu komórkowego są powiązane z swoimi partnerami, tj. kinazami cyklino zależnymi.
Progresja komórek ssaków – kompleksy cyklin i kinaz zależnych od cyklin (ich występowanie zależne od fazy cyklu komórkowego):
Wyjście z G0 i przejście w G1 – obecność cykliny D, wiąże się z Cdk4 i Cdk6 - D-CDK4, D-CDK6, pod koniec fazy dochodzi do rozpadu tych kompleksów.
W G1 - włącza się kompleks cyklina E z Cdk2 – E-CDK2
Przejście przez fazę S – kompleks cykliny A z Cdk2 – A-CDK2
W fazie G2, Wejście w mitozę – kompleks cykliny D z Cdk2 i cykliny A z Cdk2.
Udział białka retinoblastoma (pRb) w progresji cyklu:
Wejście komórek w fazę S – fosforylacja białka retinoblastoma przez kompleksy: cyklina D1 z Cdk4, cyklina D1 z Cdk6, cyklina E z Cdk2.
Cyklina A-CDC2 (CDC2=CDK1), cyklina B-CDC2 fazy G2 i M
Fosforylacja – uwalnianie czynników transkrypcyjnych, aktywacja genów kodujących białka umożliwiające przejście przez fazę S.
Jeżeli pRb jest nieufosforylowane jest połączone z czynnikiem transkrypcyjnym E2F1-3. Gdy komórka znajduje się przy końcu fazy G1, wszystkie 3 kompleksy cyklin i CDK mocno fosforylują białko retinoblastoma. Po fosforylacji tego białka dochodzi do odłączenia czynnika transkrypcyjnego, który przyłącza się do DNA i uruchamia transkrypcję białek niezbędnych do zakończenia fazy S.
Odpowiedź komórek ssaków na uszkodzenia:
Uszkodzenie DNA
Uszkodzone sensory
Systemy naprawy DNA Odpowiedź transkrypcyjna Apoptoza Uszkodzenie punktów kontrolnych
Mogą funkcjonować niezależnie, ale najczęściej białka zaangażowane w jeden typ odpowiedzi biorą również udział w innym typie reakcji komórek na uszkodzenia DNA.
Punkty kontrolne:
Dawniej – specyficzne punkty restrykcyjne, w których komórka sprawdza integralność przed wejściem w kolejne fazy, zatrzymanie cyklu i sprawdzanie czy nie ma uszkodzeń
Aktualnie – aktywacja punktów kontrolnych nie jest unikalnym i wyjątkowym procesem, jest to odpowiedź komórkowa na uszkodzenia DNA (szereg szlaków biochemicznych) prowadzących do opóźnienia, zatrzymania cyklu lub apoptozy.
Brak uszkodzeń – niezakłócony cykl – przejścia G1/S, G2/M, faza S(+M) są ściśle kontrolowane
Te same białka biorą udział w regulacji progresji cyklu komórkowego jak również w aktywacji punktów kontrolnych i zatrzymania cyklu
Najważniejsze punkty kontrolne:
G1/S
Faza S
G2/M
Zaburzenia działania punktów kontrolnych – konsekwencje biologiczne
Zatrzymanie G1 – aktywacja systemów naprawy (DSB, BER, NER)
Po replikacji – brak zatrzymania powoduje zmiany/mutacje nieodwracalne, prowadzące do apoptozy, starzenia komórki, nieprawidłowego rozdziału chromosomów, a nawet ich aberracji
Przekazywanie sygnału, a uszkodzenia DNA
Uszkodzenie
Rozpoznanie
Sensory
Mediatory
Przekaźniki
Białka efektorowe
Naprawa DNA Zatrzymanie cyklu Apoptoza
Komórkowego
Aktywacja punktów kontrolnych – białka uczestniczące (umowne):
Sensory: ATM, ATR, kompleks Rad17, kompleks Rad1/Rad9/Hus1 (9-1-1), kompleks MRN
Mediatory: BRCA1, BP53, MDC1
Przekaźniki: Chk1, Chk2
Efektory: CDC25, p53
Sensory:
Sensor prowadzący do aktywacji punktów kontrolnych
RPA – punkty kontrolne i naprawa DNA
RPC/PCNA – sensor charakterystyczny dla odpowiedzi komórki na zatrzymanie cyklu komórkowego
ATM, ATR
Zapoczątkowują dwie główne ścieżki uruchomienia punktów kontrolnych przy uszkodzeniach DNA
Aktywność: ATM-DSBs, ATR- różne typy uszkodzeń DNA, zakłócenie procesu replikacji
Kompleks Rad17-RFC i 9-1-1 specyficzny dla aktywnych punktów kontrolnych
Rad17-RFC (75kDa)- ATPaza stymulowana przez DNA, wiażąca się z DNA i przyłączająca klamrowy kompleks białek 9-1-1 na DNA w miejscach uszkodzenia przy udziale ATP
9-1-1 – kompleks Rad9/Rad1/Hus1 – przyłączone do DNA w odpowiedzi na stres po działaniu czynnika genotoksycznego
Fosforylacja Rad17 przez ATR przy uszkodzeniach DNA – konieczne do uruchomienia punktów kontrolnych w odpowiedzi na uszkodzenie
Mediatory:
Modyfikatory sygnału lub adaptery – grupy białek regulatorowych dla punktów kontrolnych charakteryzujące się złożoną (kompleksową) funkcją zarówno powyżej jaki i poniżej ATR i ATM
Białka zawierające domenę BRCT odpowiedzialne za interakcje białko-białko, a także oddziałuje z sensorami, białkami efektorowymi, białkami związanymi z naprawą DNA itp.
W komórkach ludzkich:
BRC11
53BP1 (p53 binding protein 1)
TopBP1 (topoisomerase binding protein 1)
MDC1 (mediator of DNA damage checkpoint 1)
Mediatory oddziałują z sensorami uszkodzeń DNA (ATM), białkami naprawy DNA (MRN), przekaźnikami sygnałów (Chk2) i białkami efektorowymi (p53)
Przekaźniki sygnału:
Kinazy Chk1 i Chk2
Serynowotreoninowe kinazy ze zróżnicowaną specyficznością substratową(fosforyzują wiele białek)
Dwie drogi:
DSB->ATM->Chk2
Uszkodzenia UV->ATR->Chk1
Chk1 (-/-) – śmiertelność na poziomie embrionalnym u myszy
Chk2 (-/-) - …
Syndrom Li-Fraumeni-like – predyspozycja dla rozwoju nowotworów
Efektory p53, CDC25A, CDC25B, CDC25C
Białka CDC25 biorą udział w inaktywacji kinazy zależnej od cykliny związanej z cykliną (odwracalne)
Domena podlegająca fosforylacji (interfaza lub mitoza). Zaangażowana tylko domena regulacyjna(domena katalityczna nie). Fosforylują konkretne miejsca – zatrzymanie cyklu- bezpośredni wynik to inaktywacja aktywności fosfatazowej, a w konsekwencji brak progresji cyklu komórkowego
Defosforylacja kinaz zależnych od cyklin (CDK) (bezpośrednio powiązanych z progresją cyklu komórkowego)
- fosfatazy
- fosforylacja wielu miejsc przez różne kinazy
- fosforylacja zwiazana z punktem kontrolnym (Chk1, Chk2) - inaktywacja CDC25 (bezpośrednia inhibicja, usunięcia z jądrą komórkowego i/lub proteolityczna)
Punkt kontrolny G1/S
Chroni komórkę przed wejściem w fazę S w obecności uszkodzeń DNA przez zahamowanie zapoczątkowania replikacji
– aktywacja ATM/ATR dwie ścieżki sygnalizacyjne:
Inicjacja zatrzymania G1/S
- fosforylacja Chk1/2 a następnie Cdc25A -> brak inicjacji replikacji
Utrzymywanie zatrzymania G1/S
- szybka odpowiedź (1), druga ścieżka włącza fosforylację P53
- ATM/ATR
Punkt kontrolny G2/M
Wejście w mitozę – defosforylację Cdc2 – uzależniona od fosforylacji Cdc25C
Aktywacja ścieżki ATM/Chk2/Cdc25 lub ATR/Chk1/Cdc25 – zatrzymanie cyklu komórkowego w G2
Fosforylacja Cdc25A – wiązanie do białka 14-3-3-cytoplazmatyczna degradacyjna poprzez ubikwitynację
Schemat aktywacji i zatrzymania cyklu bardzo podobne dla punktów kontrolnych
Uszkodzenie
Zatrzymanie widełek replikacyjnych
Aktywacja ATM białka RPA, ATR
Chk2 fosforylacja Rad17(ładuje klamrowy kompleks)
Fosforylacja p53 fosforylacja miejsc serynowych w Chk1
Nagromadzenie p53 fosforylacja CDC25
Łączenie z cyklinami i kinazami- łączenie z cyklinami i kinazami-
Zatrzymanie cyklu komórkowego(S?) zatrzymanie cyklu komórkowego(G2/M)
Onkogeneza – cykl komórkowy
Wiele regulatorów cyklu komórkowego – onkogeny i supresory
Choroby ze zwiększoną predyspozycją do nowotworów
Kontrola G1/S najczęściej podlega deregulacji
Nadmierna ekspresja cyklin lub inaktywacja inhibitorów Cdk
P53 – 50% nowotworów(mutacja powoduje – brak apoptozy, brak zatrzymania cyklu komórkowego)