Wykład II – 22.10.2011
Chemiczne mutageny – aktywacja metaboliczna promutagenów
Ksenobiotyki substancje obce dla organizmów żywych, (gr. Ksenos – obcy, bioticos – dotyczący życia)
Metabolizm ksenobiotyków – procesy określające los substancji w organizmie;
Czynniki wpływające na rozlokowanie ksenobiotyków w organizmie.
Proces zmieniający charakter substancji z hydrofobowej na hydrofilową w celu ułatwienia eliminacji z organizmu
Biotransformacja – podział
Faza I (modyfikacja, przyłączanie grup funkcyjnych)
Faza II (sprzęganie)
Bioaktywacja niektórych związków (powstający metabolit jest bardziej toksyczny niż oryginalny związek)
Biotransformacja:
Proces, w którym substancje obce (ksenobiotyki) ulegają w organizmach przemianom chemicznym metabolity o różnej aktywności
Detoksykacje – w wyniku biotransformacji produkt o słabszym działaniu toksycznym; biologicznie nieczynne)
Bioaktywacje – biotransformacja substancji biologicznie nieczynnej, wykazującej słabe działanie toksyczne powstanie silnie toksycznego metabolitu (aktywacja metaboliczna)
Bezpośrednio mogą reagować z DNA (bezpośrednie mutageny)
Wymagające aktywacji metabolicznej
Główne drogi eliminacji:
Odchody (żółć, mocz)
Wydychane powietrze
Chemiczne mutageny:
Bezpośrednio mogą reagować z DNA (bezpośrednie mutageny)
Wymagające aktywacji metabolicznej (protomutageny)
Klasa mutagenów | Przykład związku | mechanizm |
---|---|---|
Naturalne | Aflatoksyna B1 | Aktywacja |
Policykliczne aromatyczne węglowodory | Benzapiren Benzoantracen |
|
Aromatyczne aminy | Fenylenodiamina 2-naftyloamina |
|
Nitrozoaminy | DNM (dimetylonitrozoamina) NNK (4-metylonitrozoamina) |
|
Nitrozomoczniki | ENU (etylonitromocznik) – bezpośredni mutagen MNU (metylonitrozomocznik) |
Bezpośredni mutagen (bardzo niewiele bezpośrednich mutagenów) |
Bioaktywacja – aktywacja metaboliczna
Faza I – Modyfikacja polarne metabolity
Oksydacja
Hydroliza – polarne metabolity
Redukcja
Faza II – sprzęganie (do nich sprzęgane są toksyny, powstają hydrofilowe metabolity)
Glutation
Kwas glukaronowy
Aminokwasy
Grupy metylowe
Grupy acetylowe
Grupy sulfonowe
Faza I: MODYFIKACJA
Oksydacja (najważniejsza)
Cytochrom P450 (cała grupa złożona z izoenzymów), oksygenaza flawonowa, dehydrogenazy (alkoholowa, aldehydowa), oksydazy i inne
Redukcja
Reduktazy (reduktaza NADPH – cytochrom P450)
Hydroliza
Peptydazy, esterazy, hydrolazy (enzymy w siateczce śródplazmatycznej i cytozolu)
Faza I - reakcje:
N – oksydacja
S – oksydacja
redukcja karbonylu
hydroliza estrów
desulfuracja
dehydrogenacja
Faza I: CYTOCHROM P450 (przede wszystkim zaangażowany)
Wewnątrztkankowa lokalizacja
Membranowe związanie
Gładkie retikulum endoplazmatyczne
Obecność Cytochromu P450 w organizmach:
Większość organów; wątroba – najwięcej
Nerki, skóra, płuca, jelita – znacznie mniej niż w wątrobie.
Faza I: cytochrom P450 – monooksygenoza
Hemoproteina; gr. prostetyczna; żelazoporfiryna IX
Reakcja: RH + O2 + NADPH + H+ ROH + H2O + NADP+
1 atom tlenu włączony do substratu (R), 1 atom tlenu redukowany do wody (monooksygenazy) + NADPH jako kofaktor.
Ścisły związek z reduktazą NADPH-cytochrom P450 donor 1 lub 2 elektronów
+ fosfolipidy – system monooksygenazy cytochromu P450
Alternatywny 2 elektronowy : NADPH/NADH reduktaza NADPH/NADH – cyt b5
Cykl katalityczny cytochromu P450
1. Przyłączenie substratu do enzymu
2. Donacja elektronu
3. Dodanie tlenu i przebudowa
4. Donacja kolejnego elektronu z wydzieleniem wody
Liczba znanych cyt. P450 6000 (2000 ssaki, ludzie ok. 60, bakterie >20)
nazwa: CYP, np. CYP3A4, CYP3A7 (265 rodzin, 18 u ssaków)
CYP1A1
Nadrodzina
Rodzina ( > 40 % homologi )
Podrodzina (55% homologi )
Indywidualny enzym
Szeroka specyficzność substratowa (duża zaleta cytochromów)
Metabolizm ksenobiotyków
Udział w biosyntezie i przemianach endogennych substratów np. steroidów, prostaglandyn, tromboksanów, pochodnych kwasów tłuszczowych
Najważniejsze ludzkie cytochromy P450
CYP | Lokalizacja | Substraty |
---|---|---|
1A1 | Płuco, serce, przewód pokarmowy | PAH, benzo(α)piren |
1A2 | Wątroba | Aminy aromatyczne, PAM |
1B1 | Skóra, mózg, serce, łożysko, wątroba, nerki | PAH |
2A6 | Wątroba | Kumaryna, steroidy, |
2B6 | Wątroba, serce | Nikotyna |
2C9/10 | Wątroba | Bulbutamid, heksobarbital |
2D6 | Wątroba, mózg, serce | Β-blokery, leki antydepresyjne |
2E1 | Wątroba, płuca, mózg, serce, szpik | Nitrozoaminy, acetaminoten ?, EtOH |
3A4 | Wątroba, nerki, przewód pokarmowy, płuca, mózg | Blokery kanałów Ca, cyklosporyna, acetaminoten ?, steroidy |
4A9/11 | Nerki | Kwasy tłuszczowe |
Cytochrom 3A4 – odpowiedzialny za 52% metabolizmu wszystkich leków
Cytochrom 3D6 – odpowiedzialny za 30% metabolizmu wszystkich leków
Faza I: Metaboliczna aktywacja dimetylonitrozaminu (DMN)
Faza II – Sprzęganie
Enzymatyczna kataliza
Enzymy (transferazy) – kofaktor
Enzymy: transferaza glutationowa, acetylotransferaza, metylotransferazy, sulfotransferaza, UDP – glukuronozylotransferaza i inne.
Kofaktory: UDPGA (UDPGA (glukurotransferazy, kwas 5-urydynodifosfoglukuronowy), PAPS (5’-fosfosiarczan 3’ fosfoadenozyny, sulfotransferaza), acetylo-CoA (acetylotransferaza; aktywny octan), GSH (glutation, 3’-transferaza glutationowa)
Reakcja sprzęgania
2 etapy:
I – aktywacja endogennego związku (przez ATP, UTP - kofaktory)
II – przeniesienie na akceptor (R)
Sprzęganie z kwasem α-urydynodifosforoglukuronowy (UDPGA)
R + UDPGA ROC6H9O6 (glukuronid)
UDPGA - kwas 5’-urydynodifosfoglukuronowy
Przemieszczenie grupy glukuronylowej na ksenobiotyk jest katalizowane przez enzym UDP-glukuronozylotransferazę (UGT).
Ze względu na powszechną dostępność glukozy w tkankach sprzęganie z kwasem glukuronowym jest najczęstszą reakcją II fazy.
Połączenia z kwasem glukuronowym dają różne grupy związków chemicznych:
alkohole, fenole tworzą połączenia typu eterowego
kwasy karboksylowe – połączenia estrowe
związki z grupą sulfhydronylową (tiofenole, disiarczek tetrametylotiuramu) tworzą S-glukuronidy
aminy alifatyczne i aromatyczne, sulfonamidy, karbaminiany, heterocykliczne związki azotowe – tworzą N-glukuronidy
Niektóre ksenobiotyki (fenylobutazon, sulfinpyrozol) – tworzą C-glukuronidy
Sprzęganie z aktywnym siarczanem (PAPS) (5-fosfosiarczan – 3’fosfoadenozyny):
PAPS jest kofaktorem w reakcji sprzęgania z kwasem siarkowym. Tworzy się on w wyniku reakcji siarczanów z ATP. Źródłem siarczanów są aminokwasy siarkowe, głównie cysteina. Ze względu na ograniczoną pulę wolnej cysteiny w organizmie zwierząt alkohole i fenole przeprowadzane są w większym stopniu w połączenia z kwasem glukuronowym niż siarkowym.
Reagują z nim: alkohole, fenole, alifatyczne aminy
Sprzęganie ksenobiotyków z kwasem siarkowym (VI) katalizują enzymy z nadrodziny sulfotransferaz.
R + PAPS RSO3 + 5’fosforan-3’fosfoadenozyny
Produkty sprzęgania ksenobiotyków z PAPS wydalane są zazwyczaj z moczem, rzadko z żółcią.
AcetyloCoA
Reagują z nim aminy aromatyczne, niektóre alifatyczne, sulfonamidy
Reakcja z użyciem acetylotransferazy
R + AcetyloCoA Acetylo-R + CoA
GSH (glutation – γ-glutamylo-cysteino-glicyna)
Reagują z nim węglowodory aromatyczne i alifatyczne, nitroalkany
Reakcja z użyciem S-transferaz glutationowych
R+GSH R-SO kwasy merkapturowe (acetylowe pochodne cysteiny)
Faza III Biotransferacji
Dalszy metabolizm związków powstałych w fazie II, np. konjugatów glutationu do kwasów merkapturowych
Produkty II fazy ulegają aktywacji metabolicznej np. do wolnych rodników (karboniowego, episulfoniowego)
Czynniki wpływające na przebieg biotransformacji
Czynniki zewnętrzne:
Dieta
Używki
Leki
Ekspozycja na zanieczyszczenia środowiska
Ekspozycja na koserwaty żywności, pestycydy
Czynniki wewnętrzne
Różnice narządowe
Wiek
Płeć
Uwarunkowanie gatunkowe
Uwarunkowanie genetyczne: polimorfizm genetyczny
Czynniki wewnętrzne:
różnice narządowe
Uszkodzenie związane z mechanizmem i drogą absorpcji
- anatomiczna pozycja i funkcja narządu (jelita, wątroba, nerki)
Biochemiczna charakterystyka i spektrum metaboliczne
Podobieństwo do endogennych substancji
. . .
wiek
płody, noworodki, starzy ludzie – bardziej wrażliwe na leki niż dorośli
człowiek i zwierzęta - zazwyczaj wydajnośc metaboliczna wzrasta wraz z wiekiem (płody, noworodki – 20-50% aktywności osób dorosłych)
sprzęganie: mała spraność z kwasem glutationowym – zatrucie lekami, glicyna, glutation↓ = acetylacja
. . .
płeć
zależność gatunkowa
najbardziej zaznaczona wśród gryzoni
myszy zazwyczaj odwrotnie niż szczury
u ludzi także
zaleznośc od substancji (szczury)
hydroksylacja aniliny – ♀=♂
hydroksybarbital – (czas snu: ♀ dłuższa niż ♂, metabolizm większości ziązków ♂>♀ – ok. 3x)
związek metabolizmu z hormonami
kastracja szczurów ♂ – ↓ metabolizm heksobarbitalu,
↑ metabolizm po suplementacji hormonami
Reakcje II fazy – różnice gatunkowe - brak sprzęgania: (trudność w określeniu toksyczności w przypadku nowych związków):
Kot z kwasem glukuronowym
Świnia z kwasem siarkowym
Świnka morska z glutationem (brak kwasów merkapturowych)
Pies – brak acetylacji
Polimorfizm genetyczny – faza I
Metabolizm popafenonu (lek przeciwarytmiczny) – CYP2D6
Wolna hydroksylacja (3 rodzaje fenotypów)
Szybka hydroksylacja ( WT allele; mutacje nie mają wpływu na aktywność) zróżnicowanie dawek
Populacja kaukaska – 7% defektywnych genów
Populacja azjatycka – 50% defektywnych genów
Polimorfizm genetyczny – faza II
Różnice etniczne – N-aceetylotransferaza
Eskimosi –acetylacja szybka – 95-100%
Drogi prowadzące do uszkodzeń DNA i biologiczne wyniki uszkodzenia
Isoniazyd ( chemioterapie) – spadek uszkodzenia wątroby (wolna acetylacja)
Aromatyczne aminy – wzrost mutagenezy, karcenogenezy (szybka acetylacja)
Produkty rozkładu termicznego żywności – (rak odbytu, żołądka)
Podstawy genetyczne i metaboliczne mechanizmów odpowiedzialnych za nadwrażliwość na promieniowanie jonizujące
Drogi prowadzące do uszkodzeń DNA - biologiczne wyniki uszkodzenia
Czynnik genotoksyczny ─(bezpośredni promutagen)─> interakcje z DNA ─> powstanie adduktów DNA, uszkodzenie ─(naprawa DNA) ─> ekspresja uszkodzenia DNA ─> biologiczne rezultaty ─> bezpośrednia toksyczność ─> efekty
NOWA PREZENTACJA
Podstawy mechanizmów odpowiedzialnych za nadwrażliwość komórek na czynniki genotoksyczne, molekularne podłoże chorób genetycznych związanych z niesprawnymi systemami naprawy DNA
Podstawy wrażliwości na promieniowanie jonizujące
Promieniowanie - zjawisko wysyłania przez substancję energii w postaci czastek bądź fal elektromagnetycznych.
Podział promieniowania
Jonizujące (wywołuje jonizację ośrodka, przez które przechodzi); źródło: przemiany jądrowe, zachodzące w jądrze atomowym, wyzwalającym energię)
Korpuskolarne (odmiana jonizującego) – np. α, β
Niejonizujące (promieniowanie radiowe, mikrofalowe)
Jednostki
Natężenia
Ci (kiur) – historyczne
Bq (Bekerel) – 1 Bq (= 1 rozpad promieniotwórczy w ciągu 1 sekundy); 1 Ci = 3,7 x 1010 Bq
Dawki pochłoniętej energii
Gy (Grey) – ilość pochłoniętej energii podzielona przez kg żywej materii; 1 Gy-100 Rad
Jednostki dawki równoważnej (biologiczne skutki napromieniowania)
Sv (sivert) – 1Gy = 1 Sv – X, γ, β; 1mSv = 0,001 Sv
Człowiek: 3-4 Sv to dawka letalna LD50/30 (gdzie LD50 to populacja, a 30 to ilość dni)
Promieniowanie jonizujące LD50/30: 2,4 mSv to roczna dawka
Źródła promieniowania jonizującego
Naturalne - występujące w warunkach naturalnych (glebach, żywności, roślinach oraz promieniowanie kosmiczne)
40,6% - radon
3% tryton
8,2% - źródła wewnętrzne
8,4% - promieniowanie kosmiczne
13,8% - gamma
Sztuczne – izotopy promieniotwórcze, niewystępujące w przyrodzie, urządzenia jądrowe, opary rentgenowskie
25,4% - zastosowanie medyczne
0,2% - awaria czarnobylska
0,4% - inne
Biologiczne skutki promieniowania
Somatyczne – występują bezpośrednio po napromieniowaniu całego ciała. Późniejsze skutki to białaczka, nowotwory kości, zaćma, bezpłodność
WCZESNE
Choroba popromienna
Ostra
Przewlekła
Miejscowe uszkodzenia skóry
ODLEGŁE
Zmętnienie soczewek i zaćma
Aberracje chromosomowe w komórkach somatycznych
Nowotwory złośliwe
Niepłodność
Zahamowanie metabolizmu komórkowego
Genetyczne
Mutacje genowe
Dominujące
Recesywne
Aberracje chromosomowe w komórkach rozrodczych
Genetyczne – związane z mutacjami w obrębie materiału genetycznego. Duże dawki są najczęściej dawkami letalnymi. W wyniku promieniowania może wystąpić:
Uszkodzenie DNA
Zniszczenie lipoproteinowych składników błon komórkowych
Zaburzenie syntezy białek
Zmiana aktywności enzymatycznej
Zaburzenie gospodarki elektrolitycznej
Mechanizmy uszkodzeń DNA pod wpływem IR