prep biomol skrypt1

prep biomol skrypt1



SEPARACJA y-CLOBULIN Z SUROWICY KRWI

Gamma - globuliny otrzymuje się na ogół przez kombinację frakcjonowania za pomocą soli i chromatografii kolumnowej. Wysalanie można przeprowadzić za pomocą stałego siarczanu amonowego albo używając nasycony roztwór tej soli doprowadzony do pH 7,0.

Przeprowadzić wytrącanie gamma-globulin stosując następującą procedurę:

1)    Umieścić w probówce eppendorfa 0,5 ml surowicy krwi.

2)    Dodać 0, 5 ml nasyconego roztworu siarczanu amonu.

3)    Odstawić na 10 minut w temp. pokojowej, a następnie wirować przez 10 minut przy 10000 obr/minulę.

4)    Supematant odrzucić, a uzyskany osad rozpuścić w 0,5 ml 0,85% NaCl. Powtórzyć punkty 2 i 3.

5)    Uzyskany osad rozpuścić w 1 ml 0,85% NaCl. Uzyskana w ten sposób frakcja zawiera około 95% y - globulin.

6)    Pobrać 0,1 ml rozpuszczonego osadu i dodać 0,9 ml 0,85% NaCl. Zmierzyć absorbancję roztworu przy 280 nm

Otrzymane po strącaniu siarczanem amonowym osady można przechowywać w lodówce, albo przystąpić do kolejnego etapu oczyszczania po uprzednim odsoleniu uzyskanego preparatu, które wykonać można techniką filtaracji żelowej albo dializy.

FRAKCJONOWANIE PLAZMY NASIENIA KNURA ACETONEM.

Ze względu na możliwość denaturacji białek podczas frakcjonowania rozpuszczalnikami organicznymi ćwiczenie należy wykonać używając schłodzonej do temp. +4°C plazmy nasienia i zmrożonego w —20°C acetonu. Wszystkie czynności należy wykonywać w miarę możliwości szybko unikając zbytniego ogrzania próby.

1)    Pobrać 0,5 ml schłodzonej do +4°C plazmy nasienia do probówki eppendorfa. Dodać 0,5 ml zmrożonego acetonu. Dokładnie wymieszać próbę przez kilkukrotne odwrócenie probówki.

2)    Wstawić probówkę na 15 minut do zamrażarki.

3)    Po wyjęciu odwirować próbę przy 10 000 x g przez 5 minut.

4)    Przenieść 0,5 ml supematantu do kolejnej probówki. Pozostałą część supematantu odrzucić. Osad rozpuścić w 0,5 ml PBS. Podpisać probówkę z rozpuszczonym osadem i zachować ją do analiz elektro foretycznych

5)    Do pobranego supematantu dodać 0,5 ml acetonu. Wstawić probówkę na 15 minut do zamrażarki. Po wyjęciu odwirować próbę przy 10 000 x g przez 5 minut. Supematant odrzucić, osad rozpuścić w 0,25 ml PBS, podpisać i zachować do analiz elektroforetycznych.


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
prep biomol skrypt4 b)    Rozdział surowicy ki-wi na złożu Phenyl Sepharosc HP z wyk
prep biomol skrypt0 PRAKTYCZNA BIOCHEMIA BIAŁEK
prep biomol skrypt2 Ćwiczenie 1. Metody chromatograficzne. Przygotowanie kolumny, złoża i buforów d
prep biomol skrypt3 rozmiary ziarna żelu tym mniejsze są opory przepływu aJe tym gorsza jest też uz
prep biomol skrypt4 Do określenia objętości rozpuszczalnika (eluentu) wypełniającego przestrzenie m
prep biomol skrypt5 Wykonanie 1.    Kolumnę zamocować pionowo w statywie. 2.  &
prep biomol skrypt6 Wyznaczanie mas cząsteczkowych białek 1.    Wykonać pomiar spekt
prep biomol skrypt7 Ćwiczenie 2. Wstępne oczyszczanie białek różnymi technikami chromatograficznymi
prep biomol skrypt8 Wykonanie: 1)    Przemyć kolumnę 5 mi buforu A. Nie dopuścić do
prep biomol skrypt9 Przed rozpoczęciem izolacji kolumnę należy ekwilibrować poprzez przepuszczenie
prep biomol skrypt0 Ćwiczenie 3. ( hmmatografia powinowactwa białek plazmy nasienia knura wiążących
prep biomol skrypt1 Izolowanie białek wiążących jony metali Większość cząsteczek białkowych w różny
prep biomol skrypt2 3 Po zrównoważeniu złoże wysycić jonami Zn24. 4.    Po naniesien
prep biomol skrypt3 Ćwiczenie 4 < li    rafia fiydrufuhowa (HIC) i ml wróconej f
prep biomol skrypt5 Ćwiczenie 5. Rnzd/inl    ’k ji!a/m misicnin nu Tu(b
prep biomol skrypt6 Obecnie najbardziej rozpowszechnionym systemem SDS-PAGE jest układ wg Laemmli (
prep biomol skrypt7 Akrosyna (EC 3.4.21.10) to najbardziej aktywny enzym akrosomu plemnika. Wystypu
prep biomol skrypt8 Rozdział ełektroforetyczny plazmy nasienia na aktywność dysniutazy ponadtlenkow
prep biomol skrypt9 Procedura barwienia: >    Żele przenieść do oznakowanych prob

więcej podobnych podstron