prep biomol skrypt3
Ćwiczenie 4
< 'li rafia fiydrufuhowa (HIC) i ml wróconej fazy (Kł’< I
w oc/yszc/aniii białek
Chromatografia hydrofobowa (HIC)
Technika ta jest szeroko wykorzystywana do separacji i oczyszczania makrocząsteczek białkowych. Białka adsorbowane są na złożu dzięki występowaniu oddziaływań hydrofobowych fragmentów białka z hydrofobowymi ligandami złoża chromatograficznego. Spośród wielu czynników mających wpływ na wiązanie białek szczególne znaczenie ma rodzaj i stężenie soli w buforze startowym. Sól, powodując odwodnienie cząsteczek białkowych wymusza ich interakcje z Ugandami unieruchomonymi na złożu. Najczęściej stosowaniymi solami w tym rodzaju chromatografii są siarczany sodu, potasu i amonu. Po związaniu, białka eluuje się ze złoża stosując bufory o niższym stężeniu soli.
а) Oczyszczanie hemoglobiny na złożach do chromatografii interakcji hydrofobowych.
W ćwiczeniu wykorzystane zostaną złoża upakowane w kolumnach typu HiTrap (Amersham) umożliwiające przeprowadzenie rozdziałów z wykorzystaniem strzykawek. Wykorzystane zostaną złoża zawierające reszty oktyłowe, fenylowe i butylowe.
1) Przygotowanie próby : do 0,5 ml roztworu hemoglobiny dodać 0,5 ml 2M siarczanu amonowego. Próbę dokładnie wymieszać, a następnie odwirować przez 5 minut przy 12 000 obr/min.
2) Przy pomocy strzykawki, przemyć kolumnę chromatograficzną 5 ml I M siarczanu amonowego w 20 mM buforze fosforanowym (pH 6.8). Unikać zapowietrzenia kolumny.
3) Przygotować po 10 ml roztworów zawierających 20, 40, 60 i 80 % buforu elucyjnego (20
mMNa2HP04 pH 6.8).
4) Po odwirowaniu nanieść 1 ml próby na wyekwilibrowaną kolumnę chromatograficzną. Przemyć 5 ml buforu 1 M (NPL^SO^ 20 mM Na2HP04 pH 6.8.
5) Eluować (5 ml) przygotowanymi wcześniej buforami zawierającymi 20, 40, 60, 80 i 100 %
buforu elucyjnego. Zbierać frakcję wypływające z kolumny do osobnych probówek.
б) Zregenerować kolumnę przez przemycie 30 % izopropanolem (5 ml), a następnie H20 destylowaną,
6) Przeprowadzić analizę uzyskanych wyników.
Wyszukiwarka
Podobne podstrony:
prep biomol skrypt 2 Ćwiczenie 1. Metody chromatograficzne. Przygotowanie kolumny, złoża i buforów dprep biomol skrypt 7 Ćwiczenie 2. Wstępne oczyszczanie białek różnymi technikami chromatograficznymiprep biomol skrypt0 Ćwiczenie 3. ( hmmatografia powinowactwa białek plazmy nasienia knura wiążącychprep biomol skrypt5 Ćwiczenie 5. Rnzd/inl ’k ji!a/m misicnin nu Tu(bprep biomol skrypt 0 PRAKTYCZNA BIOCHEMIA BIAŁEKprep biomol skrypt 1 SEPARACJA y-CLOBULIN Z SUROWICY KRWI Gamma - globuliny otrzymuje się na ogół prprep biomol skrypt 3 rozmiary ziarna żelu tym mniejsze są opory przepływu aJe tym gorsza jest też uzprep biomol skrypt 4 Do określenia objętości rozpuszczalnika (eluentu) wypełniającego przestrzenie mprep biomol skrypt 5 Wykonanie 1. Kolumnę zamocować pionowo w statywie. 2. &prep biomol skrypt 6 Wyznaczanie mas cząsteczkowych białek 1. Wykonać pomiar spektprep biomol skrypt 8 Wykonanie: 1) Przemyć kolumnę 5 mi buforu A. Nie dopuścić doprep biomol skrypt 9 Przed rozpoczęciem izolacji kolumnę należy ekwilibrować poprzez przepuszczenieprep biomol skrypt1 Izolowanie białek wiążących jony metali Większość cząsteczek białkowych w różnyprep biomol skrypt2 3 Po zrównoważeniu złoże wysycić jonami Zn24. 4. Po naniesienprep biomol skrypt4 b) Rozdział surowicy ki-wi na złożu Phenyl Sepharosc HP z wykprep biomol skrypt6 Obecnie najbardziej rozpowszechnionym systemem SDS-PAGE jest układ wg Laemmli (prep biomol skrypt7 Akrosyna (EC 3.4.21.10) to najbardziej aktywny enzym akrosomu plemnika. Wystypuprep biomol skrypt8 Rozdział ełektroforetyczny plazmy nasienia na aktywność dysniutazy ponadtlenkowprep biomol skrypt9 Procedura barwienia: > Żele przenieść do oznakowanych probwięcej podobnych podstron